Diario de teodoro_chivatabedoya

Leratiomyces ceres (Agaricales, Strophariaceae) Nuevo registro para Colombia. Posición en la clasificación: Strophariaceae, Agaricales, Agaricomycetidae, Agaricomycetes, Agaricomycotina, Basidiomycota, Fungi

El objetivo de este informe es presenter a Leratiomyces ceres (Cooke & Massee) Spooner & Bridge 2008, macromiceto registrado por primera vez para la biota fungica de Colombia. Se especifican sus caracteres morfológicos macro y microscópicos que determinan a la especie, así como tambien información respecto a su ecología y distribución en el país. Con esta contribución, el genero Leratiomyces queda representado para el país por esta única especie. La especie se ha citada para Colombia desde el 2016 por Chivatá T. & Arias C. en otros trabajos previos a este informe:

Articulo en Researchgate.net descripción de Leratiomyces ceres:
https://www.researchgate.net/publication/347992610_NUEVO_REGISTRO_DE_Leratiomyces_ceres_BASIDIOMYCOTA_STROPHARIACEAE_PARA_COLOMBIA

Infografía Fungi Flickr:
https://flic.kr/p/2jfd4h6

Registro de Hongos Macromicetos y Líquenes para Bogotá Colombia:
https://www.researchgate.net/publication/343651635_Hongos_de_Colombia_Contribucion_al_Conocimiento_de_la_Biota_Fungica_en_Ecosistemas_de_Humedal_Bosques_Andinos_Subparamos_y_Paramos_de_Bogota_DC

Basidioma: estipitado, lignicola, principalmente gregario, en ocasiones solitario o cespitado, no higrofano, el Píleo mide entre 5 a 7 cm de diámetro, hemisférico en un principio, luego pasa a ser plano convexo con el centro umbonado, orbicular (vista apical). Margen recto, entero y ligeramente ondulado, de superficie glabra, viscida y brillosa, que luego pasa a ser seca y opaca, de color rojo que tiende a oscurecerse hacia el borde, con escamas fasciculadas originadas por restos del velo universal que forma un círculo a modo de collar cerca del borde. Himenio con lamelas y lamélulas, se encuentran próximas entre sí (apretadas), adnadas a ligeramente uncinadas, anchas, de borde liso, lamélulas atenuadas, de color café claro principio, después gris violáceo y finalmente púrpura negruzco, arista entera, blanquecina. Contexto homegeneo y hueco. Esporada de color marron oscuro.

Estípite de 4-8 cm de largo x 0.4-0.5 cm de ancho, cilíndrico, central, sub-bulboso y con tomento basal con cordones miceliares (rizomorfos), de color blanco con zonas de color naranja rojizo que se intensifica con el tiempo, pruinoso. Se engrosa ligeramente hacia la base. De consistencia fibrosa. Sin olor o sabor apreciable. Basidiosporas elipsoidales, lisas, de paredes gruesas, con poro germinal.

El trabajo de microscopia se realizó con un Microscopio Zeiss de Luz Halogena 6v 30w y reactivos rojo congo, melzer e hidróxido de potasio (KOH) 5%. Se observan basidios tetraspóricos, claviformes de 31 x 8 μm, basidiosporas elipsoidales no amiloides, de color marrón a rojo oscuro, superficie lisa, ligeramente apiculadas, con poro germinativo evidente (0,8 a 1 μm). Cistidios fusiformes, de 35,7 x 12,7 μm en general se observan hifas paralelas y presencia de fíbulas.

Segun Vasco-Palacios AM, Franco-Molano AE. 2013, en Colombia, la familia Strophariaceae esta representada por las siguientes especies:

Hypholoma sublateritium (Schaeff.) Quél.
Hypholoma subviride (Berk. & M.A. Curtis) Dennis.
Melanotus alpiniae (Berk.) Pilát.
Melanotus cassiaecolor (Berk.) Singer.
Melanotus dumontii Singer
Naematoloma subviride (Berk. & M.A. Curtis) A.H.
Naematoloma udum (Pers.) P. Karst..
Pholiota aberrans A.H.
Pholiota apiahyna Speg.
Pholiota naucorioides Singer.
Pholiota privigna (Speg.) Singer.
Pleuroflammula squarrulosa Singer.
Psilocybe angustipleurocystidiata Guzmán.
Psilocybe antioquiensis Guzmán, Saldarr., Pineda, G. García & L.-F. Velázquez.
Psilocybe argentina (Speg.) Singer.
Psilocybe bispora Guzmán, Franco-Mol. & Ram.-Guill..
Psilocybe bullacea (Bull.) P. Kumm.
Psilocybe cabiensis Guzmán, M. Torres & Ram.-Guill.
Psilocybe caerulescens Murrill.
Psilocybe caerulescens var. ombrophila R. Heim
Psilocybe castanella var. subhyperella (Singer) Guzmán.
Psilocybe clavata Guzmán.
Psilocybe columbiana Guzmán.
Psilocybe coprophila (Bull.) P. Kumm.
Psilocybe cubensis (Earle) Singer.
Psilocybe fimicola Guzmán.
Psilocybe guatapensis Guzmán, Saldarr., Pineda, G. García & L.-F. Velázquez.
Psilocybe heliconiae Guzmán, Saldarr., Pineda, G. García & L.-F. Velázquez.
Psilocybe hoogshagenii var. hoogshagenii R. Heim.
Psilocybe montana (Pers.) P. Kumm.
Psilocybe peruviana Singer.
Psilocybe phyllogena (Peck) Peck.
Psilocybe pintonii Guzmán.
Psilocybe pleurocystidiosa Guzmán
Psilocybe plutonia (Berk. & M.A. Curtis) Sacc.
Psilocybe semiangustipleurocystidiata Guzmán, Ram.-Guill. & M. Torres
Psilocybe subacutipilea Guzmán, Saldarr., Pineda, G. García & L.-F. Velázquez
Psilocybe subcubensis Guzmán
Psilocybe subheliconiae Guzmán, Ram.-Guill. & M. Torres.
Psilocybe subhoogshagenii Guzmán, M. Torres & Ram.-Guill.
Psilocybe wrightii Guzmán.
Psilocybe yungensis Singer & A.H. Sm.
Psilocybe zapotecorum R. Heim.
Stropharia semiglobata (Batsch) Quél.

Vasco-Palacios AM, Franco-Molano AE. 2013. Diversity of Colombian macrofungi (Ascomycota-Basiciomycota). Mycotaxon, 121: p. 48. www.mycotaxon.com/resources/checklists/VascoPalacios-v121...

Posición taxonómica, Hongos, Basidiomycota, Agaricomycotina, Agaricomicetos, Agaricomycetidae, Agaricales, Strophariaceae, Leratiomyces (Mycobank, 2018; Indexfungorum.org, 2018). Según Noordeloos M.E., (2011), esta especie cuenta con aproximadamnete 21 sinonimias. Nombre actual 2018, Leratiomyces ceres (Cooke & Massee) Spooner & Bridge, Mycotaxon 103: 116 (2008)

Sinonimia:
Agaricus squamosus f. aurantiacus Cooke, Handbook of British Fungi: 199 (1887)
Agaricus ceres Cooke & Massee, Grevillea 16 (79): 72 (1888)
Flammula puiggarii Speg., Boletín de la Academia Nacional de Ciencias en Córdoba 11 (4): 418 (1889) Hypholoma aurantiaca (Cooke) J. Faus
Hypholoma aurantiacum (Cooke) Faus, Boletín de la Sociedad Micologica Castellana 7: 70 (1982) Hypholoma puiggarii Raithelh, 1985
Naematoloma aurantiaca (Cooke) Guzmán
Nematoloma aurantiacum (Cooke) Guzmán (1975)
Naematoloma aurantiacum (Cooke) Guzmán, Beihefte zur Nova Hedwigia 51: 114 (1975)
Nematoloma aurantiacum (Cooke) Guzmán ex Singer (1986)

Naematoloma puiggarii Singer, 1969
Psilocybe aurantiaca (Cooke) Noordel., Persoonia 16 (1): 128 (1995)
Psilocybe ceres (Cooke & Massee) Sacc., Sylloge Fungorum 9: 140 (1891)
Psilocybe squamosa var. aurantiaca (Cooke) Papetti: 23 (2011)
Stropharia aurantiaca (Cooke) M. Imai, Journal of the Faculty of Agriculture of the Hokkaido Imperial University 43: 267 (1938)
Stropharia percevalii var. aurantiaca (Cooke) Sacc., Sylloge Fungorum 5: 1016 (1887)
Stropharia squamosa var. aurantiaca (Cooke) Massee, British Fungus-Flora 1: 402 (1892)

Stropholoma aurantiacum (Cooke) Balletto, Micologia Italiana 18 (1): 36 (1989)
Stropholoma aurantiacum (Cooke) Ryman, Funga Nordica: 913 (2008)
Stropholoma aurantiaca (Cooke) Ryman (2008)
Stropharia thrausta; Moreno & Albertó (1996)

Según Kirk et al. (2008) se han determinado 1316 especies de la familia Strophariaceae, registrandosen en todo el mundo desde del Ártico a las zonas antárticas (Pegler et al. 1980, Singer 1986, Borgen et al. 2006). Para el caso del Sur y Centro de américa, se han registrado en total, 281 especies y 7 variedades de esta familia, pertenecientes a 18 géneros (Coimbra VRM., 2015).

El género Leratiomyces comprende pocas especies, según consulta en index fungorum existen alrededor de 16 especies en todo el mundo, para Colombia este es el primer registro del género Leratiomyces y la respectiva especie L. ceres http://www.indexfungorum.org/Names/Names.asp Leratiomyces atrovirens Bresinsky y Manfr. Binder 1998; Strophariaceae Leratiomyces ceres (Cooke & Massee) Spooner & Bridge 2008, (véase también Species Fungorum: Leratiomyces ceres ); Strophariaceae Leratiomyces coccineus (Massee y Wakef.) Bresinsky y Manfr. Binder 1998; Strophariaceae Leratiomyces cucullatus (Shope & Seaver) Beever y DC Park 2008, (ver también Species Fungorum: Leratiomyces cucullatus ); Strophariaceae Leratiomyces erythrocephalus (Tul. Y C. Tul.) Beever y DC Park 2008, (véase también Species Fungorum: Leratiomyces erythrocephalus ); Strophariaceae Leratiomyces laetissimus (Hauskn. & Singer) Borov., J. Stříbrný, Noordel., Gryndler & Oborník 2011, (véase también Species Fungorum: Leratiomyces laetissimus ); Strophariaceae Leratiomyces magnivelaris (Peck) Bridge & Spooner 2008, (véase también Species Fungorum: Leratiomyces magnivelaris ); Strophariaceae Leratiomyces percevalii (Berk. & Broome) Bridge & Spooner 2008, (véase también Species Fungorum: Leratiomyces percevalii ); Strophariaceae Leratiomyces riparius (AH Sm.) Redhead 2014, (ver también Species Fungorum: Leratiomyces riparius ); Strophariaceae Leratiomyces similisBresinsky y Manfr. Binder 1998; Strophariaceae Leratiomyces similis (Pat. Ex Sacc. Y Trotter) Bresinsky y Manfr. Binder ex Redhead & McNeill 2008, (ver también Species Fungorum: Leratiomyces similis ); Strophariaceae Leratiomyces smaragdinus Pat. ex Bresinsky y Manfr. Binder 1998; Strophariaceae Leratiomyces squamosus (Pers.) Bridge & Spooner 2008, (véase también Species Fungorum: Leratiomyces squamosus ); Strophariaceae Leratiomyces squamosus var. squamosus (Pers.) Bridge & Spooner 2008; Strophariaceae Leratiomyces squamosus var. Thraustus (Kalchbr.) Bridge & Spooner 2008, (ver también Species Fungorum:Leratiomyces squamosus ); Strophariaceae Leratiomyces tesquorum Adamčík & Vizzini 2018, (véase también Species Fungorum: Leratiomyces tesquorum ); Strophariaceae

La literatura la reporta como originaria de Australia y por tal motivo, alóctona en el resto de continentes (Watiling & Gregory 1987; Noordelos, 2011). Ampliamente distribuido en Europa y Norte América (Watiling & Gregory, 1987; Noordeloos, 2011. Daams (1991) menciona que una de sus vías de dispersión podría ser “el tráfico a nivel mundialde plantas y sustratos realizados en las últimas décadas, dadas sus preferencias de crecimiento sobre sustratos lignícolas o humícolas más o menos artificiales en parques y jardines; no obstante, no parece estar del todo claro su estado de especie invasora”

Tomando como referencia los registros de los autores y los consolidados en la plataforma iNaturalista y gbif.org, la especie ha sido observada en Cota Cundinamarca, Engativá Bogotá D.C., Humedales del noroccidente de Bogotá (Humedal La Conejera, Humedal Cordoba, Humedal Tibabuyes, Humedal Torca-guaymaral), Humedal Santa Maria del Lago, Jardín Botánico José Celestino Mutis Bogotá D.C., Parque El Virrey Bogotá D.C., Parque La Florida Cundinamarca,Villamaría Caldas y Quebrada la Vieja (Cerros Orientales).

El Humedal La Conejera, se encuentra ubicado al noroccidente de Bogotá D.C. sus límites están dados por la quebrada La Salitrosa hacia el oriente y el río Bogotá al occidente; cuenta con aproximadamente 59 hectáreas y es considerado como una de las zonas con mayor biodiversidad de la ciudad. Altura promedio de 2542 msnm, humedad relativa del 80% (Chisacá, 2002) y una temperatura mínima que varían entre 0.9°C y – 4.2°C y promedio de 18-19°C (FHLC, 2002). Alberga mamíferos terrestres como la zarigüeya (Didelphis pernigra), curí (Cavia anolaimae), comadreja andina (Mustela frenata), murciélago fru-gívoro (Sturnira bogotensis) y la musaraña (Cryptotis thomasi), reptiles como la culebra sabanera (Atractus crassicaudatus) y el lagarto collare-jo (Stenocercus trachycephalus), anfibios como la rana sabanera (Dendropsophus labialis) y rana campana (Colostethus subpunctatus). Según el Plan de Manejo Ambiental (PMA,2006) del Humedal es el hábitat de 116 especies de aves, como las tinguas pico verde (Gallinula melanops), pico rojo (Gallinula galeata), pico amarillo (Fulica americana), chamicero (Synallaxis subpudica), alcaraván (Vanellus chilensis), monjita (Chrysomus icterocephalus), coquito (Phimosus infuscatus), cucarachero de pantano (Cistothorus apolinari), monjita (Chrysomus icterocephalus), búho negruzco (Asio stygius), gavilán ma-romero (Elanus leucurus) y gavilán pollero (Rupornis magnirostris) (Chivatá & Acosta, 2016). Con este tipo de aportes, se hace enfasis en la necesidad de estudios más específicos de la biota fungica de la ciudad y la importancia de su vinculación con la comunidad aledaña a los diferentes tipos de ecosistemas. El desarrollo de estas iniciativas, no se limita a producir conocimiento científico, sino que integra la experimentación con la acción social, de tal forma, que se crean espacios para iniciar y dar continuidad a procesos comunitarios en pro del reconocimiento y comprensión de la consciencia ambiental, con el fin de sensibilizar sobre la importancia de reconocer, preservar y conservar los humedales como lugares anclados a una estructura ecológica, biológica, cultural y social.

Otras consideraciones de la especie: respecto al valor nutricional no se reconoce alguna propiedad, sin olor o sabor destacable. Su comestibilidad no está especificada o se le reporta como "desconocido" (Courtecuisse, Duhem, 2007; Arora, 1986; Desjardin, Wood, Stevens, 2014; Trudell &Ammirati, 2009; Gerhardt y Grzyby, 2006). Por otra parte, los análisis de Anastos et al. (2008) sugieren que L. ceres contiene psilocibina en cantidades relativamente grandes (9,700-9,900 mg/kg peso seco). Agradecemos a la Facultad de Ciencias y Educación de la Universidad Distrital Francisco José de Caldas, Alcaldía Local de Suba, Humedales Bogotá, Beatriz Guataquí, Hugo Daniel Plazas e Interpretes ambientales del Jardín Botánico de Bogotá José Celestino Mutis y Aguas Bogotá.

Recomendaciones para tus registros. Las fotografías y descripciones que hagas, te van a permitir identificar el ejemplar:

-Tomar fotografías de las diferentes estructuras del basidioma/ascoma/cuerpo fructifero/carpoforo/seta (por encima, por debajo y de perfil), su estipe, pileo y base, en el caso de retirar el ejemplar sin conocerlo, debes comprometerte a realizar una descripción detallada para aportar a su conocimiento y que no quede en una muestra arrancada, fotografiada y desechada. Además de retirarlo con sustrato para conocer otras características de la base del basidioma.

-Es importante que describas las dimensiones (altura y diametro), forma, consistencia, textura, color y olor. Recuerda que los ejemplares cambian bastante según su estado de desarrollo, así que es ideal familiarizarse con la zona y temporada en la que crecen, para hacer un seguimiento y logres observar la variabilidad fenotípica del basidioma o ascoma (cuerpo fructífero).

-Toma fotos del entorno y agrega datos del ecosistema (humedad, temperatura, altura, tipo de bosque, insectos asociados, etc).

-No olvides que la determinación de macromicetos es compleja y no se realiza únicamente con fotografías, esta tarea (a nivel de género y especie; en la mayoría) implica actividades de descripción morfológica externa e interna, esporada, reacciones químicas, microscopia e incluso herramientas moleculares (ADN/PCR).

otras recomendaciones en:
Grupo XYLARIA Hongos de Colombia ©2016
FACEBOOK: www.facebook.com/groups/xylariahongosBogota/
INSTAGRAM: www.instagram.com/neotropical_fungi/
teodorot@outlook.es 3102084355
Determinación realizada por Teodoro Chivatá y Camila Arias el 5/06/2016 en la Localidad de Suba (Humedal La Conejera) Bogotá, Colombia.

La infinidad de formas, tamaños, colores, olores, sabores e indiscutible vitalidad del reino fungi en los ecosistemas, ha llamado la atención de diferentes sociedades y disciplinas. Por mucho tiempo, los humanos han establecido complejas relaciones con el fin de interpretar su fisiología, morfología, ecología y evolución, logrando así, el reconocimiento de beneficios reales y potenciales, en campos como la medicina tradicional y occidental, en la industria alimentaria, farmacológica, cosmética y textil. Incluso, su implementación como bioindicadores y biorremediadores, ha promovido una serie de investigaciones que permiten una mayor aproximación a la compleja e interesante biología de los hongos.

En las siguiente infografías se logra visualizar algunas estructuras generales de los macromicetos (Ascomicetos y Basidiomicetos):
https://drive.google.com/drive/folders/1tn-JDRz-_PIBXYJmyoyvY_IbIkbipGPf?usp=sharing

Según la checklist de macromicetos de Colombia, realizada por Vasco A. y Franco E. (2013), en el país se han registrado 1.239 especies de macrohongos, de los cuales 181 son ascomicetos y 1058 basidiomicetos, donde la familia Xylariaceae representa la mayor riqueza en el grupo Ascomycota, con 70 especies y los Agaricales (principalmente hongos con lamelas) para el grupo Basidiomycota, con 537 especies; estos datos se plantean tras revisar 130 artículos publicados entre 1930 y 2011 (Franco E. y Uribe, 2000; Franco E. et al. 2010; Vasco A. y Franco E., 2013).

Recomendaciones para tus registros de Macromicetos (Seta, callampa, cogumello, basidioma, ascoma, esporoma, carpoforo, cuerpo fructífero). Las fotografías y descripciones que hagas, te van a permitir identificar el ejemplar:

-Tomar fotografías de las diferentes estructuras del basidioma/ascoma/cuerpo fructifero/carpoforo/seta (por encima, por debajo y de perfil), su estipe (píe), píleo (sombrero) y base. En el caso de retirar el ejemplar sin conocerlo, debes comprometerte a realizar una descripción detallada para aportar a su conocimiento y que no quede en una muestra arrancada, fotografiada y desechada. Para trabajos de identificación, es necesario que retires el ejemplar completo, sin cortar o maltratar la base del estípite, de igual forma, tomar nota del tipo de sustrato (material donde crece y desarrolla).

-Es importante que describas las dimensiones (altura y diámetro), forma, consistencia, textura, color y olor. Recuerda que los ejemplares cambian bastante según su estado de desarrollo, así que es ideal familiarizarse con la zona y temporada en la que crecen, para hacer un seguimiento y logres observar la variabilidad fenotípica del basidioma o ascoma (cuerpo fructífero).

-Toma fotos del entorno y agrega datos del ecosistema (humedad, temperatura, altura, tipo de bosque, insectos asociados, etc).

-No olvides que la determinación de macromicetos es compleja y no se realiza únicamente con fotografías, esta tarea (a nivel de género y especie; en la mayoría) implica actividades de descripción morfológica externa e interna, esporada, reacciones químicas, microscopia e incluso herramientas moleculares (ADN/PCR).

Bibliografía General de Macromicetos:
https://drive.google.com/drive/folders/19VZivWVc5ueyBABX73KIfBGei9smvMzh?usp=sharing

Ejemplo #1: Infografía de Volvariella bombycina var. flaviceps
https://flic.kr/p/2mcdvpf

Volvariella bombycina var. flaviceps Nuevo Registro en Yopal Casanare, 2019
Pluteaceae, Agaricales, Agaricomycetidae, Agaricomycetes, Agaricomycotina, Basidiomycota, Fungi. Registrado por Teodoro Chivatá, en Yopal Casanare, 2019

Pileo subcónica al principio, pasando a ser convexa o semiplana, superficie seca, recubierta de pelos sedosos (lanoso) que tienden a ser de color amarillo intenso hacia el centro. Lamelas libres, numerosas, apretadas y anchas, de color blanco que tienden a volverse rosadas, color similar a la esporada. Borde denticulado

Estípite central y cilíndrico de 5 a 14 cm de largo; 1–3 cm de diametro; que tiene a ensancharse hacia la base, curvado, superficie seca y blanco, sin anillo. Base envuelta en una volva espesa, en forma de saco y
de color blanco a marrón; Esporas 7–8,5 x 4–5 µm; Elipsoides y lisas (Objetivo de 100x)

Crece sobre madera en doscomposición o sobre la corteza de arboles, de hábito solitario o gragario.

Reconocida por su delicado sabor y alto contenido de nutrientes; posee propiedades medicinales, principalmente antioxidantes, anticancerígenas, antitumorales e hipercolesterolémicos (Badalyan, 2003), incluso ha revelado propiedades antibacterianas (Jegadeesh, et al., 2010).

Ejemplo #2: descripción de Leratiomyces ceres:
https://www.researchgate.net/publication/347992610_NUEVO_REGISTRO_DE_Leratiomyces_ceres_BASIDIOMYCOTA_STROPHARIACEAE_PARA_COLOMBIA

Infografía Fungi Flickr:
https://flic.kr/p/2jfd4h6

Descripción: basidioma estipitado, lignícola, principalmente gregario, en ocasiones solitario o cespitado, no higrófano, píleo de 5 a 7 cm de diámetro, hemisférico en un principio, luego pasa a ser plano convexo con el centro umbonado, orbicular (vista apical). Margen recto, entero y ligeramente ondulado, de superficie glabra, viscida y brillosa, que luego pasa a ser seca y opaca, de color rojo que tiende a oscurecerse con el tiempo, con escamas blancas y fasciculadas en el margen, originadas por restos del velo universal. Himenio con lamelas y lamélulas, se encuentran próximas entre sí (apretadas), adnadas a ligeramente uncinadas, anchas, de borde liso, lamélulas atenuadas, de color café claro principio, después gris violáceo y finalmente púrpura negruzco, arista entera, blanquecina. Contexto homegeneo y hueco. Esporada de color marrón oscuro. Estípite de 4-8 cm de largo x 0.4-0.5 cm de ancho, cilíndrico, central, sub-bulboso y con tomento basal con cordones miceliares (rizomorfos), de color blanco con zonas de color naranja rojizo que se intensifica con el tiempo, de superficie pruinosa. Se engrosa ligeramente hacia la base. En algunos ejemplares se logra observar un anillo en banda (rudimentario) adherido al estípite, delgado y efímero. De consistencia fibrosa. Sin olor o sabor apreciable. Basidiosporas elipsoidales, lisas, de paredes gruesas, con poro germinal.

*Registro de Hongos Macromicetos y Líquenes para Bogotá Colombia:
https://www.researchgate.net/publication/343651635_Hongos_de_Colombia_Contribucion_al_Conocimiento_de_la_Biota_Fungica_en_Ecosistemas_de_Humedal_Bosques_Andinos_Subparamos_y_Paramos_de_Bogota_DC

Otras recomendaciones en:
Grupo XYLARIA Hongos de Colombia ©2016
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